TBE och TAE används som buffertar i molekylärbiologi, främst för elektrofores av nukleinsyror. Trisbuffertar används under något basiska pH-förhållanden, som för DNA-elektrofores, eftersom detta håller DNA-lösligt i lösningen och avprotoneras så att det dras till den positiva elektroden och migrerar genom en gel. EDTA är en ingrediens i lösningen eftersom detta vanliga kelaterande medel skyddar nukleinsyror från nedbrytning med enzymer. EDTA kelaterar tvåvärda katjoner som är kofaktorer för nukleaser som kan förorena provet. Eftersom magnesiumkatjonen är en kofaktor för DNA-polymeras och restriktionsenzymer hålls emellertid koncentrationen av EDTA avsiktligt låg (cirka 1 mM koncentration).
Du behöver inte sterilisera lösningen. Även om nederbörd kan inträffa efter en tidsperiod är stamlösningen fortfarande användbar. Du kan justera pH med hjälp av en pH-mätare och droppvis tillsätta koncentrerad saltsyra (HCl). Det är bra att lagra TBE-buffert vid rumstemperatur, även om du kanske vill filtrera stamlösningen genom ett 0,22 mikron filter för att ta bort partikel som kan främja nederbörd.
Förvara flaskan med 10X buffertlösning vid rumstemperatur. Kylning påskyndar nederbörden.
Lösningen späds ut före användning. Späd 100 ml 10X lager till 1 liter med avjoniserat vatten.
Fördelen med 5X-lösningen är att det är mindre troligt att det fälls ut.
Förberedelse
Om du använder en 5X eller 10X lagerlösning av misstag ger du dåliga resultat eftersom lika mycket värme kommer att genereras. Förutom att du ger dålig upplösning kan provet skadas.
Förberedelse
Tillsätt 100 ml 5X TBE-lösning till 900 ml destillerat avjoniserat vatten. Blanda noga före användning.
Även om TBE och TAE är vanliga elektroforesbuffertar, finns det andra alternativ för ledande lösningar med låg molaritet, inklusive litiumboratbuffert och natriumboratbuffert. Problemet med TBE och TAE är att Tris-baserade buffertar begränsar det elektriska fältet som kan användas vid elektrofores eftersom för mycket laddning orsakar en språngstemperatur.